Kim Soo Hyun

Welcome to my precious blog, hope it helps you finding out something new!!

Lee Min Ho

Welcome to my precious blog, hope it helps you finding out something new!!

Jung Yong Hwa

Welcome to my precious blog, hope it helps you finding out something new!!

Mario Maurer

Welcome to my precious blog, hope it helps you finding out something new!!

h

Kim Woo Bin

Welcome to my precious blog, hope it helps you finding out something new!!

Tampilkan postingan dengan label Laporan Praktikum Penyakit Penting Tanaman. Tampilkan semua postingan
Tampilkan postingan dengan label Laporan Praktikum Penyakit Penting Tanaman. Tampilkan semua postingan

Senin, 18 November 2013

IDENTIFIKASI PENYAKIT PADA BUAH PEPAYA




IDENTIFIKASI PENYAKIT PADA BUAH PEPAYA
(Laporan Praktikum Penyakit Penting Tanaman)








Oleh

Tety Maryenti
1014121179












LABORATORIUM HAMA DAN PENYAKIT TANAMAN
PROGRAM STUDI AGROTEKNOLOGI
FAKULTAS PERTANIAN
UNIVERSITAS LAMPUNG
2013



I.    PENDAHULUAN



A.    Latar Belakang
   
Fungsi fisiologis tumbuhan merupakan hal yang penting dalam pertumbuhan tanaman. Melalui fungsi fisiologis kita dapat mengamati gejala yang ditimbulkan oleh tanaman yang sakit. Tumbuhan dikatakan sehat atau normal, apabila tumbuhan tersebut dapat melaksanakan fungsi-fungsi fisiologisnya sesuai dengan potensi genetik terbaik yang dimilikinya. Simtomatologi adalah ilmu yang mempelajari tentang gejala (symptom) penyakit pada tumbuhan. Pada umumnya tumbuhan yang sakit akan menunjukkan gejala yang khas dan dengan mudah gejala tersebut dapat dilihat dengan mata tanpa alat bantu dan tanda penyakit. Tanda penyakit adalah semua struktur pathogen yang terdapat pada permukaan tanaman yang dapat dilihat secara makroskopis dan struktur tersebut berasosiasi dengan tanaman yang sakit.
Melalui tanda penyakit, peneliti dapat mempelajari identifikasi mikrobia, uji morfologi, fisiologi, dan serologi dengan melakukan proses isolasi. Isolasi adalah mengambil mikroorganisme yang terdapat di alam dan menumbuhkannya dalam suatu medium buatan. Proses pemisahan atau pemurnian dari mikroorganisme lain perlu dilakukan karena semua pekerjaan mikrobiologis, misalnya telaah dan identifikasi mikroorganisme, memerlukan suatu populasi yang hanya terdiri dari satu macam mikroorganisme saja. Prinsip dari isolasi mikroba adalah memisahkan satu jenis mikroba dengan mikroba lainnya yang berasal dari campuran bermacam-macam mikroba. Hal ini dapat dilakukan dengan menumbuhkannya dalam media padat sel-sel mikroba akan membentuk suatu koloni sel yang tetap pada tempatnya.
Pada praktikum kali ini, akan mempelajari cara inokulasi, reisolasi pathogen dan pengamatan hasil reisolasi serta mempelajari penyakit Antaknosa pada Pepaya baik dari gejala yang timbul, pathogen yang menyerang sampai pencegahan dan pengendalian penyakit tersebut.


B.  Tujuan Praktikum

Tujuan dari praktikum kali ini adalah sebagai berikut :
1.    Mengetahui gejala dan tanda penyakit  Antaknosa pada Pepaya.
2.    Mengetahui masa inkubasi penyakit Antarknosa dengan berbagai perlakuan.
3.    Mengetahui perkembangan pathogen Colletotrichum gloeosporioides pada media agar.






















II.    METODOLOGI PRAKTIKUM



A.    Alat dan Bahan

Adapun alat-alat yang digunakan dalam praktikum inokulasi yaitu pinset, cutter, plastic, label. Bahan-bahan yang digunakan yaitu buah papaya sumber inokulum. Sedangkan alat-alat yang digunakan dalam praktikum reisolasi C. gloesporiodes yaitu jarum ose, Laminar Air Flow, Bunsen, label. Bahan-bahan yang digunakan yaitu alcohol, papaya yang telah terinfeksi C. gloesporiodes. Sementara alat-alat yang digunakan dalam praktikum pengamatan C. gloesporiodes yaitu mikroskop, kaca preparat, kaca penutup preparat serta alat-alat tulis yang dibutuhkan. Bahan yang digunakan dalam praktikum antara lain tissue, biakan C. gloesporiodes hasil reisolasi


B.    Cara Kerja

Adapaun cara kerja yang dilakukan dalam praktikum inokulasi pathogen yaitu
1.    Disiapkan alat dan bahan yang akan digunakan
2.    Dicuci papaya yang sehat
3.    Dibuat 2 lubang pada papaya yangs ehat
4.    Lubang 1 untuk perlakuan papaya sakit
5.    Lubang 2 untuk control
6.    Kemudian perlakuan 3 ditempelkan dengan papaya yang sakit
7.    Dimasukkan kedalam kantong dan diamati

Adapun cara kerja yang dilakukan dalam praktikum reisolasi cendawan C. gloesporiodes adalah sebagai berikut:
1.    Disterilkan tangan praktikum dengan menggunakan alkohol
2.    Disterilkan jarum ose dengan alkohol lalu dipanaskan di dekat Bunsen
3.    Diambil cendawan yang aktif di pepaya yang telah terinfeksi
4.    Media dibuka perlahan dan didekatkan dekat bunsen
5.    Ditaruh pepaya yang terinfeksi tersebut di media secara hati-hati
6.    Ditutup dan diberi label

Sementara cara kerja yang dilakukan dalam praktikum kali ini pengamatan C. gloesporiodes adalah sebagai berikut :
1.    Diambil sedikit cendawan C. gloesporiodes dari media PDA
2.    Diletakkan di atas preparat
3.    Diberi aquades dan ditutup dengan cover glass
4.    Diamati melalui mikroskop.





















III.  HASIL PENGAMATAN DAN PEMBAHASAN


A.  Hasil Pengamatan

Hasil Inokulasi pada Buah Pepaya
Kelompok    Gambar    Keterangan
3         Gejalanya:
Warna berubah coklat kekuning-kyningan dan busuk basah, serta berbau
Tanda Penyakit : Terdapat hifa

Penularan Penyakit Antaknosa Pada Buah Pepaya Sehat
Kelompok    Hari/Masa inkubasi    Tanda    Gejala
    K    P    TP    K    P    TP    K    P    TP
1    +    +    +    +    +    +    +    +    +
2    +    +    +    +    +    +    +    +    +
3    +    +    +    +    +    -    +    +    -
4    +    +    +    +    +    +    +    +    +
5    +    +    +    +    +    +    +    +    +
6    +    +    +    +    +    +    +    +    +
7    +    +    +    +    +    +    +    +    +
8    +    +    +    +    +    +    +    +    +
9    +    +    +    +    +    +    +    +    +
   
Pengamatan pathogen Pada Mikroskop
No    Gambar     Keterangan
1   
     Colletotrichum gloeosporioides
2   

     Fusarium spp.
Jamur yang tumbuh pada kelompok 3. Terdapat makrokonidia dengan bentuk sekat-sekat dan lonjong.


B.    Pembahasan

Penyakit antraknosa merupakan salah satu penyakit pasca panen yang penting pada papaya. Penyebab penyakit tersebut adalah Colletotrichum gloeosporiedes.
Gejala serangannya dapat muncul pada saat pengiriman atau ketika dipasarkan. Gejala serangan pasca panen umumnya timbul ketika buah sedang dalam transportasi, pemasaran atau penyimpanan. Pada saat buah masih berada di pohon, patogen dalam kondisi laten dan akan berkembang setelah buah menjadi matang.
Perlu melakukan identifikasi untuk konfirmasi patogen antraknosa pada pepaya. Identifikasi dapat dilakukan dengan beberapa cara, antara lain dengan melihat tanda penyakit, karakterisasi morfologi dan sifat biologi patogen. Spesies Colletotrichum dapat dikelompokkan menjadi dua grup berdasarkan bentuk konidianya yaitu straight dan curve. Identifikasi Colletotrichum sp dapat dilakukan berdasarkan morfologi dan kisaran inangnya. Respon terhadap suhu juga dapat digunakan untuk menunjukkan kesamaan antar isolat. Identifikasi spesies Collethotrichum dapat dilakukan dengan melihat pertumbuhan optimal , vegetatif compatibility, respon terhadap fungisida dan biologi molekuler. yang dapat menurunkan mutu buah.
Gejala yang muncul yaitu bentuk bercak-bercak cokelat sampai hitam pada buah. Gejala-gejala awal adalah kebasah-basahan dan terdapat cekungan pada buah. Bintik ini kemudian berubah menjadi hitam dan kemudian merah muda ketika jamur menghasilkan spora daging di bawah titik menjadi lembut dan berair, yang menyebar ke seluruh buah. Pada daun juga dapat dilihat. bintik yang akhirnya berubah menjadi cokelat. Pada buah, gejala muncul hanya pada saat pematangan dan mungkin tidak terlihat di waktu panen  Gejala yang nampak adalah adanya tempat cekung di permukaan buah, yang kemudian memperbesar membentuk lesion. Daging buah yang terkena menjadi lebih lembut dan cepat membusuk

Penyebab penyakit
Penyakit ini disebabkan oleh (C. gloeosporioides). C. gloeosporioides mempunyai aservulus berbentuk bulat, jorong, tidak teratur, berseta atau tidak. Seta mempunyai panjang yang variabel, tetapi jarang yang lebih dari 200mm, tebal 4-8mm, bersekat 1-4, bewarna cokelat, pangkal agak membengkak dengan ujung meruncing yang sering membentuk konidium pada ujungnya.
Daur Penyakit
.Cendawan ini merupakan parasit lemah yang dapat menginfeksi dan berkembang pada jaringan yang telah menjadi lemah, khususnya karena proses penuaan. Cendawan ini dapat menginfeksi melalui luka atau lentisel. Konidium jamur dipencarkan oleh angin dan air hujan. Infeksi buah banyak terjadi dari konidium yang berasal dari bercak pada daun dan tangkai daun.

Faktor-faktor yang mempengaruhi penyakit
Faktor-faktor yang mempengaruhinya yaitu :
1.    Lingkungan dan penanganan buah pepaya.
2.    Penyakit banyak ditemukan pada kebun-kebun yang lembab, pada tanah pH 5,5 atau lebih rendah.
3.     Kerusakan lebih banyak terjadi pada buah yang luka.

Pengendalian
Pengelolaan berbasis PHT dapat dilakukan dengan saran sebagai berikut:
1.    Berusaha untuk tidak membuat luka pada buah
2.    Membersihkan lahan dari sisa-sisa tanaman yang berpenyakit
3.    Mengatur jarak tanam
4.    Tidak menanam pepaya secara tumpangsari dengan tanaman lain yang dapat menjadi inang C. gloeosporioides,
5.    Pemetikan buah pada saat buah asih bewarna hijau
Isolasi mikroorganisme ialah proses pengambilan mikroorganisme dari lingkungannya untuk kemudian ditumbuhkan dalam suatu medium di laboratorium. Proses isolasi ini menjadi penting dalam mempelajari identifikasi mikrobia, uji morfologi, fisiologi, dan serologi. Sedangkan pengujian sifat-sifat tersebut di alam terbuka sangat mustahill untuk dilakukan.
Definisi isolasi yang lain adalah mengambil mikroorganisme yang terdapat di alam dan menumbuhkannya dalam suatu medium buatan. Proses pemisahan atau pemurnian dari mikroorganisme lain perlu dilakukan karena semua pekerjaan mikrobiologis, misalnya telaah dan identifikasi mikroorganisme, memerlukan suatu populasi yang hanya terdiri dari satu macam mikroorganisme saja. Prinsip dari isolasi mikroba adalah memisahkan satu jenis mikroba dengan mikroba lainnya yang berasal dari campuran bermacam-macam mikroba. Hal ini dapat dilakukan dengan menumbuhkannya dalam media padat sel-sel mikroba akan membentuk suatu koloni sel yang tetap pada tempatnya.
Pada praktikum kali ini, dilakukan isolasi cendawan Colletotrichum gloeosporioides yang menyebabkan penyakit antraknosa pada papaya di media biakkan yaitu PDA. Media ini digunakan agar cendawan ini dapat tumbuh dengan baik dan didapatkan hasil yang sesuai. Namun pada saat reisolasi terjadi kontaminasi, sehingga saat diamati ternyata bukan cendawan Colletotrichum gloeosporioides tetapi Fusarium spp.

Fusarium spp. adalah salah satu genus cendawan berfilamen yang banyak ditemukan pada tanaman dan tanah. Genus ini terdiri dari 20 spesies yang di antaranya meliputi: Berbagai spesies Fusarium tersebut dapat menyebabkan penyakit pada manusia dan tanaman karena infeksi dan mikotoksin yang dihasilkannya.
Karakteristik
Golongan Fusarium dicirikan dengan struktur tubuh berupa miselium bercabang, hialin, dan bersekat (septat) dengan diameter 2-4 µm. Cendawan ini juga memiliki struktur fialid yang berupa monofialid ataupun polifialid dan berbentuk soliter ataupun merupakan bagian dari sistem percabangan yang kompleks. Reproduksi aseksual cendawan ini menggunakan mikrokonidia yang terletak pada konidiospora yang tidak bercabang dan makrokonidia yang terletak pada konidiospora bercabang dan tak bercabang. Makrokonidia dibentuk dari fialid, memiliki struktur halus serta bentuk silindris, dan terdiri dari 2 atau lebih sel yang memiliki dinding sel tebal. Sedangkan mikrokonidia yang dihasilkan umumnya terdiri dari 1-3 sel, berbentuk bulat atau silinder, dan tersusun menjadi rantai atau gumpalan.
Patogenisitas terhadap Tanaman
Beberapa spesies Fusarium merupakan patogen pada tanaman yang dapat menyebabkan penyakit hawar yang menyerang gandum di berbagai belahan Eropa, Amerika, dan Asia hingga menjadi epidemik dan mengakibatkan kerugian akibat kegagalan panen. Penyakit yang disebabkan oleh Fusarium ini umumnya disebut sebagai Fusarium head blight (FHB) atau scab dan dipengaruhi oleh kelembaban udara yang berlebihan pada musim tertentu. FBH dapat diatasi dengan penggunaan benih tanaman gandum transgenik yang resisten terhadap FBH. Umumnya ada dua tipe tanaman resisten FBH, yaitu tanaman yang resisten terhadap penetrasi Fusarium dan tanaman yang resisten terhadap penyebaran Fusarium di dalam jaringan tubuhnya. Beberapa spesies Fusarium, terutama F. sambucinum dapat menyebabkan busuk pada umbi kentang. Gejala dari pembusukan ini adalah permukaan kentang menjadi keriput atau cekung ke dalam dan jaringan internalnya berwarna coklat serta membusuk. Penyakit ini dapat dikontrol dengan melakukan pembersihan dan desinfeksi alat-alat pemanenan dan menyimpan hasil panen pada tempat dengan humiditas yang tidak terlalu tinggi.
Cendawan ini tumbuh mungkin disebabkan pengambilan sumber inokulum yang tidak dibagian yang aktifnya, sehingga bagian buah yang busuk sudah dikontaminasi oleh cendawan ini. Hal penyebab kegagalan lainnya dimungkinkan kesalahan praktikan dalam proses reisolasi sehingga terjadi kontaminasi.
Pembiakkan Kultur Murni Pathogen
Pathogen ini dapat dibiakkan di media yang baik yangs esuai dengan lingkungan tempat pathogen tumbuh. Baik pH, suhu ruang, nutrisi harus mendukung terhadap pertumbuhan pathogen. Media yang digunakan yaitu PDA yang berada pada cawan agar atau petry dish.



IV.KESIMPULAN



Adapun kesimpulan yang dimaambil dari praktikum ini adalah:
1.    Gejala penyakit antraknosa pada buah pepaya yaitu bercak-bercak cokelat sampai dengan kehitaman.
2.    Colletotrichum gloeosporioides merupakan cendawan yang menyerang lebih dari satu jenis tanaman dan merupakan penyakit yang menyerang pasca panen.
3.    Hasil reisolasi jamur yang tumbuh pada kelompok kami adalah Fusariuma spp.




















DAFTAR PUSTAKA



Anonim. 2013. http://cybex.deptan.go.id/penyuluhan/penyakit-busuk-buah-antraknosa-pada-pepaya. Diakses 12 April 2013. Pukul 21.00 WIB
Lacy ML, Hammerschimdt R . 1993. Disease of potato: Fusarium dry rot. Michigan State : University Extension.
Pelczar, M. J. 1986. Chan Eement of Microbiology. Edisi 1.Penerjemah Ratna sri Hadioetomo et. al. UI Press. McGraw-Hill book company. [diunduh tanggal 18 April 2012].
Semangun, Haryono. 2007. Penyakit- penyakit tanaman hortikultura di Indonesia. Edisi Kedua. Gadjah Mada University Press. Yogyakarta.
Singleton dan Sainsbury. 2006. Dictionary of Microbiology and Molecular Biology 3rd Edition. John Wiley and Sons. Sussex, England.












Rabu, 25 September 2013

INTENSITAS BEBERAPA PENYAKIT PENTING TANAMAN KENTANG (Solanum tuberosum L.) PADA SISTEM PERTANAMAN PETANI DAN SISTEM PERTANAMAN MENGGUNAKAN BENIH SEHAT





INTENSITAS BEBERAPA PENYAKIT PENTING TANAMAN KENTANG (Solanum tuberosum L.) PADA SISTEM PERTANAMAN PETANI DAN SISTEM PERTANAMAN MENGGUNAKAN BENIH SEHAT
(Laporan Penyakit Penting Tanaman)







Oleh
Intan Andya Bellapama
1014121113

Posted by : Tety Maryenti








 










PROGRAM STUDI AGROTEKNOLOGI
FAKULTAS PERTANIAN
UNIVERSITAS LAMPUNG
2013





                                                                                                                                                      I.            PENDAHULUAN

A. Latar Belakang
Tanaman    kentang    memiliki prospek yang cukup menjanjikan untuk dikembangkan karena produksi kentang di Indonesia masih tergolong rendah bila dibandingkan dengan negara-negara produsen lainnya. Kendala utama produksi kentang di negara tropis termasuk Indonesia adanya penyakit-penyakit  berbahaya  yang diketahui berakibat terhadap penurunan hasil yang nyata dan penggunaan benih secara turun temurun. Beberapa penelitian di luar negeri menunjukkan bahwa kehilangan hasil akibat Potato Leaf Roll Virus  (PLRV)  sekitar  20  –  30%.  Potato virus  Y  antara  30  –  40%  dan  penyakit busuk daun rata-rata menghabiskan  13,5%  biaya  produksi  penggunaan  fungisida dan tenaga kerja. Selain itu pula terdapat pula penyakit penting lainnya seperti layu bakteri dan penyakit puru akar akibat serangan nematode.

Penggunaan benih secara turun temurun merupakan salah satu sebab merosotnya produksi dan tingginya intensitas serangan penyakit tertentu, terutama   jenis   penyakit   yang   terbawa benih. Selain keadaan iklim suatu daerah dan sistem budidaya yang tidak optimal mempengaruhi perkembangan dan penyebaran suatu penyakit.

Benih sehat merupakan benih yang dihasilkan  melalui  teknik  kultur  jaringan yang  telah  disertifikasi  oleh  Balai Sertifikasi Benih Tanaman Pangan dan Hortikultura. Toleransi tentang adanya serangan pada benih kentang oleh badan ini   adalah:   a)   benih   generasi   0   (G0) toleransi penyakit virus adalah 0% dan penyakit  layu  bakteri  0%,  b)  benih generasi  satu (G1)  toleransi  virus 0,01% dan   penyakit   bakteri/nematoda   0%,   c) benih  generasi  dua  (G2)  toleransi  virus 0,1%    dan    penyakit    bakteri/nematode 0,5%, d) benih generasi tiga (G3) toleransi virus 0,5% dan penyakit bakteri/nematode 0,5%,   e)   benih   generasi   empat   (G4)toleransi  virus  2%  dan  penyakit  bakteri 1%.

B. Tujuan
Tujuan dari pembuatan makalah ini adalah untuk mengetahui   jenis-jenis   penyakit   penting dan intensitas serangannya pada tanaman kentang pada sistem pertanaman benih unggul dan sistem pertanaman petani setempat.






















                                                                                                                                       II.            BAHAN DAN METODE

Penelitian dilaksanakan di lahan pertanaman kentang, Dusun Bulubalea, Desa Bulutana, Kecamatan Tinggi Moncong, Kabupaten Gowa dengan ketinggian tempat ± 1400m. dpl yang dilaksanakan pada Juni hingga Juli 2005.
Metode yang digunakan dalam penelitian ini adalah pengamatan gejala serangan  penyakit  secara  langsung dengan dua petak pengamatan yaitu lahan pertanaman petani dan lahan pertanaman dengan menggunakan benih sehat. Jarak antara kedua lahan tersebut ± 500 m.
Pada sistem pertanaman petani, sistem penanaman mengikuti cara yang biasa dilakukan oleh petani. Sedangkan pada pertanaman benih sehat (benih hasil perbanyakan secara kultur jaringan), sebelum  penanaman,  benih  terlebih dahulu direndam pada suspensi mikroba antagonis  (Gliocladium  sp.  dan Trichoderma sp.). Mikroba antagonis yang digunakan  diperbanyak  dalam  media dedak.  Konsentrasi  yang  digunakan adalah 300 gram Trichoderma sp. dan 300 gram Gliocladium sp. dicampur dengan air sebanyak 30 liter. Selanjutnya dilakukan perendaman  bibit  selama  30  menit. Setelah itu, bibit diangkat dan langsung ditanam.
Pelaksanaan penelitian mengguna- kan petak sampel sebanyak 5 petak pada setiap perlakuan, yang berukuran 1 x 6 m2, dengan jarak antar petak 1m. Pada setiap petak diambil secara acak 5 sampel tanaman (untuk pengamatan penyakit dengan gejala lokal). Sedangkan untuk penyakit dengan gejala sistemik, penga- matan  dilakukan  dengan  menghitung jumlah  tanaman   terserang   pada  setiap petak sampel. Pengamatan dilakukan setelah tanaman berumur 30 hari, selanjutnya  pengamatan  dilakukan  setiap minggu, hingga minggu ke 5.
Perhitungan intesitas serangan penyakit untuk tingkat serangan yang bervariasi menggunakan rumus yaitu :

          Σ (ni x vi)
I  =   ------------  x  100%
              Z x N

Dimana :
I     =  Intensitas serangan
vi    =  Nilai skala pada tiap tanaman ke-i
ni    =  Tanaman ke-i yang menunjukkan gejala pada perlakuan tertentu
N     =  Jumlah tanaman yang diamati
Z     =  Nilai skala tertinggi yang digunakan

Nilai skala yang digunakan adalah :
0   =  Tidak ada serangan
1   =  1 – 2 daun terserang
2   =  3 – 10 daun terserang
3   =  Lebih dari 10 daun terserang
4   =  Tanaman mati




Untuk menghitung tingkat serangan mutlak (penyakit layu dan serangan virus) digunakan rumus :
          a
I  =  ----- x 100%
           b

Dimana :
I   =  Intensitas serangan (%)
a  = Jumlah tanaman terserang
b  =  Jumlah tanaman yang diamati






















                                                                                             III.            HASIL PENGAMATAN DAN PEMBAHASAN


1. Penyakit Hawar Daun (Phythopthora infestans)
Penyakit hawar daun mulai ditemukan pada tanaman kentang ketika berumur 4 minggu setelah tanam (MST). Intensitas serengan meningkat sejalan dengan bertambahnya umur tanaman, namun peningkatan intensitas serangan antara tanaman dari benih sehat dengan benih yang ditanam oleh petani masing- masing  berbeda.  Perbedaan  tersebut dapat dilihat pada Tabel 1.

Tabel 1. Rata-rata intensitas penyakit hawar daun (Phythopthora infestans)               pada petak benih sehat (P0) dan petak pertanaman petani (P1) selama             5 minggu pengamatan.
Pengamatan Ke-
Umur Tanaman (HST)
Intensitas Serangan (%)
P0
P1
1
30
1,96
11,50*
2
37
2,58
17,81*
3
44
2,81
21,60*
4
51
8,42*
27,23*
5
58
25,71*
48,69*
            Angka-angka yang diikuti dengan tanda (*) menunjukkan berbeda nyata pada uji T.



Rata-rata intensitas serangan P. infestans lebih rendah pada petak benih sehat dibanding dengan petak pertanaman petani. Hal ini disebabkan pada perlakuan P0 merupakan perlakuan dengan menggunakan  benih sehat dan dilakukan pemeliharaan secara teratur. Selain dilakukan pengendalian dengan cara kimiawi juga digunakan pengendalian penyakit dengan mikroba antagonis yang dapat menekan pertumbuhan pathogen. Sedangkan pada petak pertanaman petani diduga menggunakan benih yang rentan terhadap penyakit serta tidak melakukan pengendalian dengan menggunakan mikroba  antagonis,  petani  hanya melakukan   pengendalian   kimiawi   pada saat pathogen telah menginfeksi tanaman.
Salah satu upaya pengendalian penyakit tanaman khususnya pathogen yang dapat menginfeksi secara cepat seperti cendawan Phythopthora sp. dan Fusarium  sp.  adalah  dengan menggunakan benih sehat dan resisten (Suryaningsih, 1993).

2. Penyakit layu bakeri (Ralstonia solanacearum)
Penyakit   layu   bakteri   ditemukan pada tanaman ketika tanaman berumur 4 MST. Meskipun gejala yang ditemukan sangat  kurang  terutama  pada  perlakuan P0 (benih sehat), sedangkan pada perlakuan P1 (benih petani) intensitas serangan rata-rata pada masing-masing petak dapat dilihat pada Tabel 2.








Tabel 2. Rata-rata intensitas serangan penyakit layu bakteri (R. solanacearum)          pada benih sehat (P0) dan petak pertanaman petani (P1) selama                     pengamatan.

Pengamatan Ke-
Umur Tanaman (HST)
Intensitas Serangan (%)
P0
P1
1
30
0,25
2,82*
2
37
0,44
6,90*
3
44
0,56
7,31*
4
51
0,76
8,35*
5
58
0,77
9,82*

Rata-rata intensitas serangan R.solanacearum pada tanaman kentang pada petak benih sehat jauh lebih rendah dari pada    petak pertanaman petani. Perbedaan ini diduga akibat pada petak benih sehat menggunakan benih bebas pathogen yang telah mengalami pengujian serologi  (ELISA)  dan  teknik  PCR kemudian dipropagasi melalui teknik kultur jaringan.  Sedangkan  benih  yang digunakan oleh petani diduga berasal dari benih yang telah terinfeksi bakteri dari tanaman sebelumnya, karena petani setempat  menggunakan  benih secara turun temurun. Selain itu juga rendahnya intensitas serangan R.solanacearum pada benih sehat akibat perendaman benih ke dalam suspensi mikroba antagonis yang dapat melindung daerah perakaran tanaman. Hal ini disebabkan mikroba antagonis memiliki kemampuan menghambat pertumbuhan pathogen melalui produksi antibiotic, sehingga kemampuan pathogen untuk berkembang didaerah perakaran dapat ditekan.

3. Penyakit Virus Daun Menggulung (PLRV)
Penyakit Virus Daun menggulung ditemukan pada tanaman kentang ketika berumur  4  MST  dengan  intensitas serangan yang   sangat rendah. Intensitas serangan  pada  petak  P0  (benih  sehat) lebih rendah dibandingkan P1 (benih petani). Rata-rata intensitas serangan masing-masing petak perlakuan dapat dilihat pada Tabel 3.

Tabel 3. Rata-rata intensitas serangan penyakit Virus Daun                                        Menggulung(PLRV) pada petak benih sehat (P0) dan petak                         pertanaman petani(P1) selama pengamatan.
Pengamatan Ke-
Umue Tanaman (HST)
Intensitas Serangan (%)
P0
P1
1
30
0,47
4,56*
2
37
1,08
6,68*
3
44
1,23
8,02*
4
51
1,34
9,54*
5
58
1,50
12,20*
`           angka-angka yang diikuti dengan tanda (*) menunjukkan berbeda   nyata pada uji T.

Perbedaan  intensitas  serangan pada perlakuan benih sehat jauh lebih rendah dibanding dengan benih yang digunakan petani, hal ini disebabkan benih yang digunakan pada P0 adalah benih bebas pathogen sedangkan pada lahan pertanaman   petani   adalah   benih   yang telah terinfeksi oleh virus, karena virus merupakakan  pathogen  yang  dapat terbawa benih (Semangun, (1989). Serangan virus pada lahan dengan menggunakan benih sehat dimungkinkan akibat adanya vector yaitu Aphis sp yang berpindah  dari tanaman  terserang (tanaman  petani),  karena  pada perlakukan, tidak ada barier.

4. Penyakit Bercak Daun (Alternaria solani)
Penyakit bercak daun jarang ditemukan  pada  areal  pertanaman. Bahkan pada perlakuan P0 (benih sehat) penyakit ini tidak ditemukan. Penyakit ini hanmya ditemukan pada perlakuan P1 (benih  petani).  Intensitas  serangan penyakit ini dapat dilihat pada Tabel 4.

Tabel 4. Rata-rata intensitas serangan penyakit Bercak Daun (Alternaria                    solani) pada kentang (S. tuberosum) pada petak benih sehat (P0) dan   petak pertanaman petani (P1) selama pengamatan.
Pengamatan Ke-
Umur Tanaman (HST)
Intensitas Serangan (%)
P0
P1
1
30
0
0
2
37
0
0
3
44
0
0,35
4
51
0
0,75
5
58
0
1,2
            Angka-angka yang diikuti dengan tanda (*) menunjukkan berbeda nyata pada uji T.





















                                                                                                                                                    IV.            KESIMPULAN


1. Pada    pertanaman    benih    sehat ditemukan penyakit hawar daun (Phythopthora infestans), layu bakteri (Ralstonia solanacearum), virus daun menggulung (PLRV), sedangkan pada pertanaman  petani selain ketiga jenis penyakit, juga ditemukan penyakit bercak daun (Alternaria solani).
2. Intensitas serangan tertinggi adalah hawar daun (P. infestans) sebesar 48,
69% pada petak pertanaman petani, sedangkan terendah adalah penyakit bercak daun (A. solani) sebesar 1,2% yang hanya ditemukan pada lahan petani.



















DAFTAR PUSTAKA


Agrios, G.N. 1996. Ilmu Penyakit Tumbuhan, Gadjah Mada University Press,        Yogyakarta.

Anith,   K.N.,   T.P.   Manomohandas,   M. Jayarajan,  K. Vasanthakumar,              K.C. Aipc. 2000.  Integration Of Soil Solarization and Biological         control with A fluorescent Pseudomonas       sp. for controlling                   bacterial wilt Ralstonia solanacearum  (E.  F.  Smith) Yabuuchi of   Ginger. Journal of Biological Control. 14: 1, 25 – 29.

Bos,  L.  1990.  Pengantar  Virologi Tumbuhan, Gadjah mada University    Press, Yogyakarta.  Hal 193 – 196.

Cahyono, B. 1996. Budidaya Intensif Tanaman  Kentang,  CV.  Aneka, Solo.

Cholil,   A.   dan   A.   Latief   Abadi.   1991. Penyakit-Penyakit Penting    Tanaman Pangan, Fakultas Pertanian, Universitas Brawijaya,       Malang.

Hartus,  T.  2001.  Usaha  Pembibitan Kentang Bebas Virus, Penerbit          Swadaya, Jakarta.

Huang, J.C., S.H. Hseu, B.K. Sen. 2000.Bacterial Wilt of Jute Caused by   Ralstonia solanacearum. Plant Pathology Bulletin. 9: 1, 68 – 71.













LAMPIRAN