METODE CAWAN AGAR UNTUK MENGHITUNG MIKROORGANISME TANAH

METODE CAWAN AGAR UNTUK MENGHITUNG MIKROORGANISME TANAH
(Laporan Praktikum Biologi dan Kesehatan Tanah)






Oleh
Kelompok 2
Miandri Sabli P
Ni Wayan Devi
Reza Prasetya
Tety Maryenti
Tiya Oviana














PROGRAM STUDI AGROTEKNOLOGI
FAKULTAS PERTANIAN
UNIVERSITAS LAMPUNG
2012




I.    PENDAHULUAN


A.    Latar Belakang
Metode cawan agar merupakan metode yang paling sering dipakai untuk menghitung jumlah mikroorganisme.  Pendugaan jumlah mikroorganisme yang terdapat di dalam tanah yang terbawa erosi, air, limbah, hasil pertanian dan makanan juga menggunakan metode ini.  Jumlah total mikroorganisme yang terdapat di dalam tanah digunakan sebagai indeks kesuburan tanah tanpa mempertimbangkan hal-hal lain. Tanah yang subur mengandung banyak mikroorganisme karena populasi yang tinggi menggambarkan adanya suplai makanan dan energi yang cukup, serta kondisi ekologi lain yang mendukung perkembangan mikroorganisme tanah tersebut.  Jumlah organisme dalam tanah harus diperhitungkan sebagai deskripsi dan tidak untuk indeks kesuburan tanah semata-mata.

 Metode hitungan cawan agar didasarkan pada anggapan bahwa setiap sel yang hidup akan berkembang menjadi satu koloni.  Jadi jumlah koloni yang muncul pada cawan merupakan suatu indeks bagi jumlah organisme yang dapat hidup serta terkandung dalam sampel.  Teknik yang harus dikuasai dalam metode ini ialah pengenceran sampel dan mencawankan hasil pengenceran tersebut.  Setelah inkubasi, jumlah koloni masing-masing cawan diamati.  Untuk memenuhi persyaratan statistik,  cawan yang dipilih untuk perhitungan koloni ialah yang mengandung antara 30-300 koloni.  Karena jumlah mikroorganisme dalam sampel tidak diketahui sebelumnya, maka untuk memperoleh sekurang-kurangnya satu cawan yang mengandung koloni dalam jumlah yang memenuhi syarat tersebut maka harus dilakukan sederetan pengenceran dan pencawanan.

B.    Tujuan
Adapun tujuan dari praktikum kali ini adalah:
1.    Untuk mengetahui cara menghitung mikroorganisme tanah dengan menggunakan metode cawan agar
2.    Untuk menghitung jumlah koloni bakteri yang diperoleh dari metode cawan agar
3.    Untuk menghitung koloni fungi yang ada di tanah dengan metode cawan agar




























II.    METODOLOGI PERCOBAAN

A.    Alat dan Bahan
Adapun alat yang digunakan adalah sebagai berikut:
•    Erlenmeyer 250 ml
•    Tabung reaksi
•    Kapas
•    Timbangan
•    Pipet ukur steril
•    Autoklaf
•    Cawan petri
•    Label
•    Bunsen
•    dan Inkubator

Sedangkan bahan  yang digunakan adalah:
•    8,5 g NaCl
•    Aquades
•    10 g sampel tanah
•    Pepton 5 g
•    NaCl 5 g
•    Beef extract 3 g
•    Agar 15 g
•    Akuades 1000 ml
•    Glukose 1 g
•    K2HPO4 0,5 g
•    KNO30,1 g
•    Ekstrak tanah 100 ml
•    Mg SO4.7H2O  0,5 g
•    Dekstrose 10 g
•    Pepton 5 g
•    K2HPO4 1 g
•    Rose bengal 33 mg
•    Streptomisin 3 ml
•    Agar 20 g
•    dan Akuades 1000 ml

B.    Cara Kerja
•    Pembuatan Seri Pengenceran
1.    Dibuat larutan fisiologis (8,5 NaCl dalam 1 liter akuades)
↓
2.    Dimasukkan 90 ml larutan fisiologis ke erlenmeyer 250 ml
↓
3.    Disiapkan tabung reaksi dan dimasukkan sebanyak 9 ml larutan fisiologis serta disiapkan sampel tanah sebanyak 7 tabung reaksi
↓
4.    Ditutup erlenmeyer dan tabung reaksi dengan sumbat kapas
↓
5.    Dimasukkan erlenmeyer beserta tabung reaksi ke autoklaf selama 20 menit pada suhu 121oC
↓
6.    Didinginkan larutan tersebut sampai suhu antara 42-45oC
↓
7.    Ditimbang 10 g sampel tanah dan dimasukkan ke dalam erlenmeyer kemudian dikocok
↓
8.    Diambil pipet ukur steril dan diteteskan 1 ml larutan tanah dari erlenmeyer ke dalam tabung reaksi
↓
9.    Digunakan pipet steril untuk memindahkan 1 ml larutan 10-3 ke dalam 9 ml larutan fisiologis. Dilanjutkan sampai pada pengenceran 10-8

•    Pembuatan Medium Biakan
1.    Dilarutkan masing-masing bahan pembuatan agar nutrient dan agar ekstrak tanah ke dalam erlenmeyer
↓
2.    Disterilkan medium ke dalam autoklaf dengan suhu 121oC selama 15 menit

•    Prosedur Isolasi
1.    Diambil 1 ml larutan tanah dari seri pengenceran 10-4 -10-8 dan dimasukkan ke dalam cawan petri steril tanpa medium
↓
2.    Dituangkan ≤ 12-15 ml medium biakan bersuhu 40-50oC yang berisi 1 ml larutan tanah
↓
3.    Diberi label pada masing-masing cawan petri
↓
4.    Diinkubasi biakan mikroorganisme pada suhu ruang 28-30oC

•    Pengamatan
1.    Dilakukan pengamatan terhadap pertumbuhan fungi dan bakteri mulai hari ke-2/ke-3 setelah diinkubasi
↓
2.    Dihitung dan dicatat jumlah koloni yang muncul dan ditentukan ada berapa jenis







III.     HASIL PENGAMATAN DAN PEMBAHASAN

A.  Data Pengamatan
Pengenceran    Jumlah Koloni Fungi
    Hitam    Putih
10-3    38    43
10-4    3    21
10-5    -    17
10-6    -    7

Pengenceran    Jumlah Koloni Bakteri
10-4    49
10-5    34
10-6    24
10-7    4
10-8    1

B.  Pembahasan
Dari tabel dapat dilihat jumlah koloni fungi tertinggi pada pengenceran 10-3, dimana jumlah fungi yang berwarna hitam 38 sedangkan yang berwarna putih 43.  Jumlah fungi paling sedikit terdapat pada pengenceran 10-6 yaitu jumlah fungi keseluruhan 7.  Pada cawan fungi juga tedapat kontaminan yang diduga kontaminan dari bakteri.  Kemudian  dari hasil pengamatan cawan bakteri, jumlah koloni terbanyak yaitu pada pengenceran 10-4 sejumlah 49 koloni.  Sedangkan jumlah paling sedikit pada pengenceran 10-8 yaitu dengan jumlah bakteri 1 koloni.

Dari identifikasi mikroorganisme yang telah dilakukan fungi yang berwarna hitam merupakan fungi Aspergillus niger. Berdasarkan pendapat Schlegel dan Schmidt (1994), Aspergillus niger merupakan fungi yang berasal dari filum Ascomycetes, dimana fungi ini memiliki filamen hifa berseptat dan dapat ditemukan melimpah di alam.  Koloni fungi ini ditemukan berwarna putih ketika tumbuh di media agar dan lama kelamaan berubah menjadi hitam ketika konidianya terbentuk.

Sedangkan koloni bakteri yang berwarna putih yang diidentifikasi merupakan bakteri Azospirilium sp.  Menurut Rahmawati (2005), bakteri ini dapat meningkatkan efisiensi penyerapan N2.  Selain itu, dapat menurunkan kehilangan N akibat pencucian.  Menurut Lestari (2007), Azospirilium sp merupakan bakteri yang menghasilkan asam indoasetat yang dapat meningkatkan tinggi tanaman serta dapat membantu dalam pemanjangan akar.  Pada cawan agar terlihat bakteri ini membentuk koloni diatas permukaan media agar dengan membentuk cembungan bening.

Kontaminasi yang ditemukan di cawan agar pada koloni fungi,  diduga kontaminasi dari bakteri.  Terjadinya kontaminasi disebabkan oleh kesalahan praktikan yang kurang menjaga kesterilan alat-alat yang digunakan saat praktikum ataupun saat menginokulasi mikroorganisme praktikan tidak mensterilkan tangan dengan alkohol serta tidak memakai masker penutup hidung dan mulut.














IV.     KESIMPULAN

Adapun kesimpulan dari praktikum kali ini adalah:
1.    Jumlah koloni tertinggi pada pengenceran 10-3 yaitu koloni fungi yang berwarna hitam 38 koloni dan fungi yang berwarna putih 43 koloni.
2.    Jumlah koloni tertinggi bakteri pada pengenceran 10-4 yaitu 49 koloni.
3.    Fungi hitam yang ditemukan di cawan agar merupakan spesies Aspergillus niger.
4.    Pada cawan bakteri terlihat cembungan bening di permukaan agar yang merupakan bakteri  Azospirilium sp.
5.    Terdapat kontaminasi bakteri pada cawan yang berisikan koloni fungi dan diduga kesalahan praktikan menjadi penyebab terjadinya kontaminasi.




















DAFTAR PUSTAKA

Lestari. 2007.  Pengaruh Hormon Asam Indoasetat yang Dihasilkan Azospirilium sp Terhadap Perkembangan Akar Padi. Jurna Agrobiogen 3(2) : 66-72

Rahmawati ,N.  2005.  Pemanfaatan Biofertilizer pada Pertanian Organik. Fakultas Pertanian USU.  Medan.

Schlegel, H.G dan K. Schmidt.  1994.  Mikrobiologi Umum Edisi 6 Terjemahan.  Tedjo Baskoro.  UGM Press Yogyakarta.




















PERHITUNGAN

Fungi berwarna putih
43 x 10-3    = 43000 x 106
7   x 10-4    = 700     x 106
17 x 10-5    = 170     x 106
21 x 10-6    = 21       x 106  +
           43891 x 106 : 4 = 10972,75 x 106 cfu/ml sampel tanah

Fungi berwarna hitam
38 x 10-3    = 38000 x 106
3   x 10-6    = 3         x 106  +
           38003 x 106 : 2 = 19001,5 x 106 cfu/ml sampel tanah
Bakteri
49 x 10-4    = 490000 x 108
39 x 10-5    = 34000   x 108
24 x 10-6    = 2400     x 108
4   x 10-7    = 40         x 108
1   x 10-8    = 1           x 108 +
   526441 x 108 : 5 = 105288,2 x 108 cfu/ml sampel tanah


NB : JANGAN LUPA KASIH KOMENTAR SAMA JOIN KE SITE INI YAAAA :D MAKASIHHH

Read More

METODE MOST PROBABLE NUMBER (MPN) UNTUK MENGHITUNG NITROSOMONAS

METODE MOST PROBABLE NUMBER (MPN) UNTUK
MENGHITUNG NITROSOMONAS
(Laporan Praktikum Biologi Tanah dan Kesuburan Tanah)





Oleh

Miandri Sabli Pratama    1014121133
Ni Wayan Devhi        1014121138
Reza Prasetia            1014121152
Tety Maryenti            1014121179
Tiya Oviana            1014121185

















PROGRAM STUDI AGROTEKNOLOGI
FAKULTAS PERTANIAN
UNIVERSITAS LAMPUNG
2012



I. PENDAHULUAN


A. Latar Belakang

Perhitungan jumlah mikroba dapat dilakukan dengan perhitungan langsung maupun tidak langsung. Perhitungan secara langsung dapat mengetahui beberapa jumlah mikroorganisme pada suatu bahan, pada suatu saat tertentu tanpa memberikan perlakuann terlebih dahulu, sedangkan jumlah mikroorganisme yang diketahui dari cara tidak langsung terlebih dahulu harus memberikan perlakuan tertentu sebelum dilakukan perhitungan. Perhitungan secara langsung dapat dilakukan dengan beberapa cara antara lain adalah membuat preparat dari suatu bahan (preparat sederhana di warnai atau tidak di warnai) dan penggunaan ruang hitung (counting chamber), sedangkan perhitungan cara tidak langsung hanya untuk mengetahui jumlah mikroorganisme dalam suatu bahan yang masih hidup saja.

Metode Most Probable Number (MPN) memungkinkan kita untuk menduga populasi mikroorganisme tanpa menghitung jumlah sel atau koloni. Jumlah populasi diduga berdasarkan pengenceran tertinggi di mana pertumbuhan diamati pada pengenceran 10-4 dan tidak pada pengenceran 10-5 ,maka jumlah sel yang hidup antara 104 dan 105. Perhitungan jumlah suatu bakteri dapat melalui berbagai macam uji seperti uji kualitatif koliform yang secara lengkap terdiri dari tiga tahap yaitu uji penduga (uji kuantitatif, bisa dengan metode MPN), uji penguat dan uji pelengkap. Metode cawan agar merupakan metode yang paling sering dipakai untuk menghitung jumlah mikroorganisme. Pendugaan mikroorganisme yang terdapat di dalam tanah yang terbawa erosi, air, air limbah, hasil pertanian, dan makanan juga menggunakan metode ini.

Jumlah total mikroorganisme yang terdapat di dalam tanah digunakan sebagai indeks kesuburan tanah tanpa mempertimbangkan hal-hal lain. Tanah yang subur mengandung banyak mikroorganisme karena populasi yang tinggi menggambarkan adanya suplai makanan dan energy yang cukup, serta kondisi ekologi lain yang mendukung perkembangan mikroorganisme tanah tersebut. Namun demikian, pada dua jenis tanah yang mempunyai jumlah dan aktivitas mikroorganisme yang sama dan sebanding belum tentu menggambarkan produktivitas tanah yang sama. Hal ini dapat disebabkan karena pada tanah yang satu, unsure hara makro dan mikro yang dibutuhkan tanaman hanya dapat mencukupi keperluan mikroorganisme tanah dan tidak cukup untuk mendukung pertumbuhan tanaman secara maksimal. Oleh karena itu, jumlah mikroorganisme dalam tanah harus dipertimbangkan sebagai deskripsi dan tidak untuk indeks kesuburan tanah semata.


B. Tujuan Praktikum

Adapun tujuan dari pelaksanaan praktikum ini adalah
1.    Untuk mengetahui proses atau cara kerja metode Most Probable Number (MPN)
2.    Untuk mengetahui cara menghitung nitrosomonas dengan metode MPN
3.    Untuk mengetahui ada tidaknya mikroorganisme











II. TINJAUAN PUSTAKA


Perhitungan jumlah suatu bakteri dapat melalui berbagai macam uji seperti uji kualitatif koliform yang secara lengkap terdiri dari tiga tahap yaitu uji penduga (uji kuantitatif, bisa dengan metode MPN), uji penguat dan uji pelengkap. Waktu, mutu sampel, biaya, tujuan analisis merupakan beberapa faktor penentu dalam uji kualitatif koliform. Bakteri koliform dapat dihitung dengan menggunakan metode cawan petri (metode perhitungan secara tidak langsung yang didasarkan pada anggapan bahwa setiap sel yang dapat hidup akan berkembang menjadi satu koloni yang merupakan suatu indeks bagi jumlah organisme yang dapat hidup yang terdapat pada sampel) (Penn, 1991).

Ada beberapa cara yang dapat digunakan untuk menghitung atau mengukur jumlah jasad renik di dalam suatu suspensi atau bahan, yang dapat dibedakan atas beberapa kelompok yaitu :
A. Perhitungan jumlah sel
1. Hitungan mikroskopik
2. Hitungan cawan
3. MPN (Most Probable Number)
B. Perhitungan massa sel secara langsung
1. Volumetrik
2. Gravimetrik
3. Kekeruhan (turbidimetri)
C. Perhitungan massa sel secara tidak langsung
1. Analisis komponen sel
2. Analisis produk katabolisme
3. Analisis konsumsi nutrient
Dari metode-metode tersebut, metode hitungan cawan paling banyak digunakan. Hal ini disebabkan metode hitungan cawan merupakan cara yang paling sensitif untuk menghitung jumlah mikroba karena:
1. Hanya sel yang masih hidup yang dihitung
2. Beberapa jenis mikroba dapat dihitung sekaligus
3. Dapat digunakan untuk isolasi dan identifikasi mikroba karena koloni yang terbentuk mungkin berasal dari satu sel dengan penampakan pertumbuhan yang spesifik (Fardiaz 1989)

Metode perhitungan MPN sering digunakan dalam pengamatan untuk menghitung jumlah bakteri yang terdapat di dalam tanah seperti Nitrosomonas dan Nitrobacter. Kedua jenis bakteri ini memegang peranan penting dalam meningkatkan pertumbuhan dan produksi tanaman, sehubungan dengan kemampuannya dalam mengikat N2 dari udara dan mengubah amonium menjadi nitrat (Sutedjo, 1991).

Pengukuran kuantitatif populasi mikroorganisme sangat diperlukan untuk berbagai macam penelaahan mikrobiologis. Terdapat berbagai macam cara untuk menghitung jumlah mikroorganisme, akan tetapi secara mendasar, ada dua cara yaitu secara langsung dan secara tidak langsung. Ada beberapa cara perhitungan secara langsung, antara lain adalah dengan membuat preparat dari suatu bahan (preparat sederhana diwarnai atau tidak diwarnai) dan penggunaan ruang hitung (counting chamber). Sedangkan perhitungan cara tidak langsung hanya untuk mengetahui jumlah mikroorganisme pada suatu bahan yang masih hidup saja (viabel count). Dalam pelaksanaannya, ada beberapa cara yaitu : perhitungan pada cawan petri (total plate count/TPC), perhitungan melalui pengenceran, perhitungan jumlah terkecil atau terdekat (MPN methode), dan kalorimeter (cara kekeruhan atau turbidimetri) (Sopiah. 2007)

MPN (most Probable Number). Metode hitungan cawan dengan menggunakan medium padat, tetapi pada metode MPN dengan menggunakan medium cair di dalam tabung reaksi. Perhitungan MPN berdasarkan pada jumlah tabung reaksi yang positif, yakni yang ditumbuhi oleh mikroba setelah inkubasi pada suhu dan waktu tertentu. Pengamatan tabung yang positif dapat dilihat dengan mengamati timbulnya kekeruhan atau terbentuknya gas di dalam tabung kecil (tabung durham) yang diletakkan pada posisi terbalik, yaitu untuk jasad renik yang membentuk gas. Untuk setiap pengenceran pada umumnya dengan menggunakan 3 atau 5 seri tabung. Lebih banyak tabung yang digunakan menunjukkan ketelitian yang lebih tinggi, tetapi alat gelas (tabung reaksi) yang digunakan juga lebih banyak (Dwidjosepuutro, 2005).

Perhitungan bakteri hidup dilakukan dengan cara seri pengenceran. Cara ini secara luas digunakan untuk menghitung bakteri hidup dalam berbagai cairan seperti air, susu, biakan cair dan sebagainya. Serentetan pengenceran dibuat untuk kemudian ditanam dalam medium pembiakan bulyon agar dan setelah inkubasi jumlah koloni dihitung. Setelah dikonversi sesuai dengan pengencerannya, akan diketahui jumlah bakteri per milliliter. Karena pengenceran dikerjakan secara lipat ganda atau secara desimal, maka angka yang diperoleh hanya angka perkiraan, yang biasa disebut Most Probable Number (MPN) (Irianto, 2006).

Prinsip untama dari metode MPN ini adalah mengencerkan sampel sampai tingkat tertentu sehingga didapatkan konsentrasi mikroorganisme yang pas/sesuai dan jika ditanam dalam tabung menghasilkan frekuensi pertumbuhan tabung positif “kadang-kadang tetapi tidak selalu”. Semakin besar jumlah sampel yang dimasukkan (semakin rendah pengenceran yang dilakukan) maka semakin sering tabung positif yang muncul. Semakin kecil jumlah sampel yang dimasukkan (semakin tinggi pengenceran yang dilakukan) maka semakin jarang tabung reaksi positif yang muncul. Jumlah sampel/pengenceran yang baik adalah yang menghasilkan tabung positif “kadang-kadang tetapi tidak selalu”. Semua tabung positif yang dihasilkan sangat tergantung dari probabilitas sel yang terambil oleh pipet saat memasukkannya kedalam media. Oleh karena itu homogenisasi sangat mempengaruhi metode ini. Frekuensi positif (ya) atau negative (tidak) ini menggambarkan konsentrasi mikroorganisme pada sampel sebelum diencerkan (Dwidjoseputro, 2005).

Dalam metode MPN pengenceran sampel harus lebih tinggi daripada pengenceran pada hitungan cawan, sehingga beberapa tabung yang berisi medium cair yang diinokulasikan dengan larutan hasil pengenceran tersebut mengandung 1 jasad renik, beberapa tabung mungkin mengandung lebih dari 1 sel, sedangkan tabung yang lain mengandung sel sama sekali. Dengan demikian setelah inkubasi diharapkan terjadi pertumbuhan pada beberapa tabung, yang dinyatakan sebagai tabung positifm sedangkan tabung lainnya negatif (Waluyo, 2004).

Metode MPN biasanya digunakan untuk menghitung jumlah mikroba di dalam sampel yang berbentuk cair, meskipun dapat juga digunakan untuk sampel yang berbentuk padat dengan terlebih dahulu membuat suspense 1:10 dari sampel tersebut. Kelompok jasad renik yang dapat dihitung dengan metode MPN juga bervariasi tergantung dari medium yang digunakan untuk pertumbuhan (Dwidjoseputro, 2005).


















III. METODOLOGI PERCOBAAN


A. Alat dan Bahan

Adapun alat yang digunakan saat pelaksanaan praktikum yaitu
•    Cawan agar
•    Tabung reaksi
•    Kapas
•    Autoclave
•    Label

Sedangkan bahan yang digunakan saat pelaksanaan praktikum yaitu
•    Sample tanah
•    Medium
•    (NH4)2SO4
•    KH2PO4
•    CaCl2.2H2O
•    MgSO4
•    Fe-sitrat
•    Phenol red
•    Akuades
•    0,1 N HCl
•    0,1 N NaOH
•    1 ml larutan tanah
•    Nitrosomonas


B. Prosedur Kerja

Diambil 20 g sample tanah

Disiapkan seri pengenceran 10-1 – 10-8

Disiapkan medium untuk penetapan nitrosomonas


Dicocokkan pH medium  menjadi 7.4 dengan menambahkan 0,1 N HCl atau NaOH


Ditambahkan  akuades sehingga volumenya 1000 ml

Dimasukkan larutan medium tersebut sebanyak 9 ml ke dalam tabung reaksi

Ditutup tabung dengan kapas


Diautklaf selama 20 menit pada temperature 121˚C

Didinginkan medium

Dimasukkan 1 ml larutan tanah dari seri pengenceran 10-8 – 10-4, masing-masing
sebanyak 5 tabung reaksi dan 5 ulangan

Diberi label dan disiapkan control

Diinkubasi selama 3-4 minggu





IV. HASIL PENGAMATAN DAN PEMBAHASAN


A. Hasil Pengamatan

Seri Pengenceran    Jumlah Tabung yang Positif
10-4    2
10-5    1
10-6    0
10-7    0
10-8    0


B. Pembahasan

MPN adalah suatu metode enumerasi mikroorganisme yang menggunakan data dari hasil pertumbuhan mikroorganisme pada medium cair spesifik dalam seri tabung yang ditanam dari sampel padat atau cair yang ditanam berdasarkan jumlah sampel atau diencerkan menurut tingkat seri tabungnya sehingga dihasilkan kisaran jumlah mikroorganisme yang diuji dalam MPN/satuan volume atau massa sampel. Prinsip utama metode ini adalah mengencerkan sample sampai tingkat tertentu sehingga didapatkan konsentrasi mikroorganisme yang sesuai dan jika ditanam dalam tabung menghasilkan frekuensi pertumbuhan tabung positif. Semakin besar jumlah sampel yang dimasukkan (semakin rendah pengenceran yang dilakukan) maka semakin “sering” tabung positif yang muncul. Semakin kecil jumlah sample yang dimasukkan (semakin tinggi pengenceran) maka semakin “jarang” tabung positif yang muncul. Semua tabung positif yang dihasilkan sangat tergantung dengan probabilitas sel yang terambil oleh pipet saat memasukkannya kedalam media.

Metode MPN memiliki limit kepercayaan 95 persen sehingga pada setiap nilai MPN,terdapat jangkauan nilai MPN terendah dan nilai MPN tertinggi (Krisna, 2005).Metode MPN terdiri dari tiga tahap, yaitu uji pendugaan (presumtive test), uji konfirmasi(confirmed test), dan uji kelengkapan (completed test). Dalam uji tahap pertama,keberadaan Nitrosomonas masih dalam tingkat probabilitas rendah; masih dalam dugaan. Ujiini mendeteksi sifat fermentatif Nitrosomonas dalam sampel. Prosedur perhitungan adalahdengan penumbuhan dalam agar. Sampel suspensi sel diinokulasi ke dalam media agar nutrien dan diinkubasi. Lantas jumlah koloni yang terbentuk dihitung. Satu koloni yangterbentuk dari satu sel, maka jumlah koloni menunjukkan jumlah sel dalam larutanasalnya.

Prosedur ini hanya menghitung sel-sel yang hidup. Bakteri Nitrosomonas adalah bakteri yang mampu menambat nitrogen dari udara. Perhitungan jumlah suatu bakteri dapat melalui berbagai macam uji seperti uji kualitatif koliform yang secara lengkap terdiri dari tiga tahap yaitu uji penduga (uji kuantitatif, bisadengan metode MPN), uji penguat dan uji pelengkap. Waktu, mutu sampel, biaya, tujuananalisis merupakan beberapa faktor penentu dalam uji kualitatif Nitrosomonas.Jumlah masing-masing cawan diamati setelah inkubasi, cawan yang dipilih untuk penghitungan koloni ialah yang mengandung antara 30 sampai 300 koloni, karena jumlahmikroorganisme dalam sampel tidak diketahui sebelumnya, maka untuk memperolehsekurang-kurangnya satu cawan yang mengandung koloni dalam jumlah yang memenuhisyarat tersebut maka harus dilakukan sederetan pengenceran dan pencawanan. Jumlahorganisme yang terdapat dalam sampel asal ditentukan dengan mengalikan jumlah koloniyang terbentuk dengan faktor pengenceran pada cawan yang bersangkutan.

Pada table diatas didapat nilai P1= 2, P2= 1, dan P3= 0, sehingga jika digabungkan P1, P2, dan P3 mendapatkan nilai perhitungan sebesar 0.068 x 104. pada 10-6, 10-7, dan 10-8 tidak terdapat bakteri karena tabung tidak mengalami perubahan ke warna kuning (positif), tetapi bewarna agak keruh dan kemerahan.
Bakteri Nitrosomonas merupakan bakteri penitrifikasi. Bakteri ini dapat mengoksidasiamonium (NH4+) menjadi nitrit. Bakteri ini tergolong gram negative yang memeiliki bentuk sel batang (panjang 0.6 – 0.4 mikrometer), spiral, sferikal, ellipsoid. Bakteri ini mempunyai sel yang tidak motil dan motil dengan flagella polar sampai sub polar atau peritrik.

Bakteri nitrosomonas adalah bakteri aerob khemolitotrof obligat yang memeperoleh energi dari oksidasi ammonium, menggunakan CO2 untuk sumber utama karbon.
Bentuk bakteri ini yaitu batang (basil), pendek, kadamg-kadang berbentuk elips, motil, dan non motil. Bakteri ini dapat tumbuh optimum pada temperature 5-30˚C dan pH optimum berkisar antara 5.8 sampai 8.5, serta hidup pada habitat air laut, air tawar, dan tanah.

Adapun factor-faktor yang mempengaruhi pertumbuhan bakteri nitrosomonas yaitu :
1.    DO (Dissolvid Oxygen) = Oksigen terlarut, sebagai penyeimbang electron dari substrat bernitrogen sehingga memerlukan kurang lebih 4.5 mg oksihen
2.    Suhu (T) = bakteri ini dapat tumbuh optimal antara suhu 20-30˚C, jika temperature menurun, maka aktivitas bakteri itu sendiri menurun. Jika suhu lebih dari 35˚C, bakteri ini akan mengalami stress, sehingga enzim dapat rusak karena suhu tinggi itu
3.    pH = pH optimum yaitu antara 7.5-8.5. pH yang baik yaitu apabila dapat dipertahankan stabil.
4.    Cahaya = bakteri ini sensitive terhadap kehadiran cahaya yang mendekati spectrum ultraviolet, karena terdapat hubungan superoksida radikal yang diproduksi menghambat membrane oksigen.
5.    Konsentrasi nitrit nitrogen = bakteri ini dapat tumbuh jika kebutuhan sumber nitrogen terendah menunjukkan angka 0,1 mg/L.



V. KESIMPULAN


Adapun kesimpulan yang dapat diambil setelah melakukan percobaan ini yaitu
1.    Semakin rendah seri pengenceran, maka tidak terdapat bakteri nitrosomonas
2.    Hasil perhitungan atau analisis yang didapatkan pada P1, P2, dan P3 yaitu 0.068x 104
3.    Bakteri Nitrosomonas dapat tumbuh dengan factor-faktor seperti oksigen, suhu, pH, cahaya, dan konsentrasi nitrit nitrogen.
4.     Nitrosomonas dapat tumbuh dan berkembang dalam media yang telah dibuat



















DAFTAR PUSTAKA


Fardiaz. 1996.Menentukan Jumlah dan Ukuran Mikroba.

Irianto. 2006. Isolasi dan Seleksi Bakteri Penitrifikasi. IPB : Bogor

Nida Sopiah. 2007. Teknik Biofilter Untuk Pengolahan Limbah Ammonia. Jurnal BPPT : Jakarta

Penn, C. 1991.Handling Laboratory Microorganism. Open University. Milton

Sutedjo, M. M., A. G. Kartasapoetra dan RD. S. Sastroatmodjo. 1996. Mikrobiologi Tanah. PT. Rineka Cipta. Jakarta. 447 hal.

Sutedjo, Mul Mulyani, dkk. 1996. Mikrobiologi Tanah. Rineka Cipta, Jakarta. Tim lab. 2006. Penuntun Praktikum Purwokerto Prodi Ilmu Tanah. Faperta UNSOED, Purwokerto.

Waluyo. 2004.. Mikrobiologi Tanah. CV Rajawali : Jakarta.


NB : JANGAN LUPA KASIH KOMENTAR SAMA JOIN KE SITE INI YAAAA :D MAKASIHHH

Read More

RESPIRASI TANAH

RESPIRASI TANAH
(Laporan Praktikum Biologi dan Kesehatan Tanah)







Oleh
Kelompok 2

Miandri Sabli Pratama    1014121133
Ni Wayan Devhi        1014121138
Reza Prasetia            1014121152
Tety Maryenti            1014121179
Tiya Oviana            1014121185














PROGRAM STUDI AGROTEKNOLOGI
FAKULTAS PERTANIAN
UNIVERSITAS LAMPUNG
2012
I.  PENDAHULUAN


A.  Latar Belakang

Respirasi tanah merupakan suatu proses yang terjadi karena adanya kehidupan mikrobia yang melakukan aktifitas hidup dan berkembang biak dalam suatu massa tanah. Mikrobia dalam setiap aktifitasnya membutuhkan O2  atau mengeluarkan CO2 yang dijadikan dasar untuk pengukuran respirasi tanah. Laju respirasi maksimum terjadi setelah beberapa hari atau beberapa minggu populasi maksimum mikrobia dalam tanah, karena banyaknya populasi mikrobia mempengaruhi keluaran CO2 atau O2 yang dibutuhkan mikrobia. Oleh karena itu, pengukuran respirasi tanah lebih mencerminkan aktifitas metabolik mikrobia daripada jumlah, tipe, atau perkembangan mikrobia tanah.
Penentuan respirasi tanah lebih sering mengukur keluaran CO2 dibanding kebutuhan O2 disebabkan karena : (1) mikrobia anaerobik tetap menghasilkan CO2 walaupun tidak menghasilkan O2, (2) mikrobia mengandung enzim dekarboksilasi aktif sehingga walaupun tidak mengonsumsi O2 tetap menghasilkan CO2, (3) terjadinya dekarboksilasi aktif kimia oleh enzim bebas, dan (4) sulit untuk membuat kondisi benar-benar aerob.
Penetapan respirasi tanah didasarkan pada:
    1. Penetapan jumlah CO2 yang dihasilkan oleh mikroorganisme tanah.
    2. Jumlah O2 yang digunakan oleh mikroorganisme tanah.


B.  Tujuan

Adapun tujuan dari percobaan ini adalah sebagai berikut:
1. Mengetahui proses respirasi tanah dan penetapan jumlah CO2 yang dihasilkan.
2. Mengetahui jumlah O2 yang digunakan oleh mikroorganisme tanah.
II.  METODOLOGI


A.  Alat dan Bahan

Alat yang digunakan adalah:
•    Toples
•    Selotip
•    Pipet tetes

Bahan yang digunakan adalah:
•    Sampel tanah
•    KOH
•    Penolftalin
•    HCl
•    Metil oranye


B.  Cara Kerja

Dimasukkan 100 gr tanah lembab kedalam 1 L botol
   

Dimasukkan 5 ml 0,2 N KOH dan 10 ml aquades masing-masing dalam 10 ml gelas breaker
       

Dimasukkan kedua gelas breaker yang berisi KOH dan aquades kemudian botol ditutup
       

Diinkubasi botol-botol pada temperatur kamar ditempatkan gelap selama 1 minggu

   

Ditentukan jumlah CO2 yang dihasilkan dengan cara filtrasi didalam breaker gelas yang berisi KOH masukkan 2 tetes penolptalin
       

Dimasukkan 2 tetes metil oranye pada larutan dan dititrasi kembali dengan HCl
       

Dibuat kontrol, yaitu botol inkubasi tetapi tanpa sampel tanah







































III.  HASIL PENGAMATAN DAN PEMBAHASAN


A.  Hasil Pengamatan

Tabel hasil pengamatan jumlah CO2 yang dihasilkan tiap kilogram tanah lembab per hari (r)
Kelompok    Jumlah CO2-C    Jenis Tanah
1    3,43    Kontrol
2    5,31    NPK
3    10,28    Bensin
4    5,65    Kompos
5    2,57    Kontrol
6    4,285    NPK
7    10,8    Bensin
8    12,68    Kompos


B.  Pembahasan

Sampel tanah yang digunakan adalah tanah subur dengan pemberian NPK. Sampel tanah tersebut diinkubasi selama seminggu dengan prosedur yang telah dijelaskan pada cara kerja praktikum. Diinkubasi dalam kondisi kedap udara sehingga tidak terjadi pertukaran gas dari dalam toples keluar toples. Setelah diinkubasi, dibuka toples tersebut. Secara kasat mata atau visualisasi terjadi penambahan volume KOH dan pengurangan volume H2O. Berarti sudah jelas terjadi peningkatan CO2 oleh larutan KOH.
Untuk menguji jumlah CO2 yang dihasilkan, dilakukan titrasi dengan memasukkan 2 tetes penolptalin kedalam gelas breaker KOH.  Kemudian dititrasi dengan HCl sampai warna merah menghilang. Volume HCl yang didapat adalah 4,1 ml. Setelah berubah warna menjadi putih bening, ditambahkan 2 tetes metil oranye pada larutan tersebut, dan dititrasi kembali dengan HCl sampai warna

kuning berubah menjadi pink. Volume HCl nya adalah 10,2 ml. Jadi volume HCl yang digunakan untuk mentitrasi KOH adalah 6,1 ml.

Untuk volume HCl kontrol didapat 3 ml. Dan hasil perhitungan jumlah CO2-C yang dihasilkan tiap kilogram tanah lembab per hari (r) untuk kelompok 2 adalah 5,31 ml. Untuk jenis tanah kontrol, pada kelompok 1 dihasilkan 3,43 ml dan kelompok 5 dihasilkan 2,57 ml. Untuk jenis tanah NPK, pada kelompok 2 dihasilkan 5,31 ml dan pada kelompok 6 dihasilkan 4,285 ml. Untuk jenis tanah dicampur bensin, jumlah CO2-C yang dihasilkan pada kelompok 3 adalah 10,28 ml dan pada kelompok 7 adalah 10,8 ml. Sedangkan untuk jenis tanah kompos, pada kelompok 4 dihasilkan 5,65 ml dan pada kelompok 8 dihasilkan 12,68 ml. Untuk jenis tanah yang dicampur bensin merupakan nilai tertinggi untuk menghasilkan CO2-C (respirasi tanah tinggi). Mungkin ini disebabkan karena tanah tersebut memiliki populasi mikroorganisme yang banyak dan memiliki sumber energi yang banyak. Sedangkan untuk jenis tanah kontrol adalah yang paling rendah menghasilkan CO2-C (respirasi tanah rendah). Mungkin ini disebabkan karena sumber energi bagi mikroorganisme sedikit sehingga populasi mikroorganisme yang hidup sangat sedikit.

Menurut Swedya (1996) respirasi dan aktivitas mikroorganisme sangat erat kaitannya dengan jumlah karbon dalam tanah. Dimana tingginya bahan organik (karbon) akan dapat meningkatkan populasi mikroorganisme dan aktivitasnya, karena bahan organik digunakan oelh mikroorganisme tanah sebagai penyusun tubuh dan sumber energinya.
Sedangkan menurut Alexander (1997) jumlah dan aktivitas mikroorganisme didalam tanah dipengaruhi oleh bahan organik, kelembaban, aerasi dan sumber energi.

Biasanya konsentrasi CO2 dalam tanah dipengaruhi oleh tingginya mikroorganisme didalam tanah, produksi CO2 yang sangat berarti, aktivitas mikroorganisme tanah juga tinggi dan hal ini membantu tanah untuk tetap subur(Wahyuni, 2003).
Dan juga aktivitas mikroorganisme yang tinggi akan menghasilkan produksi CO2 yang tinggi(Sutedjo, 1996).

Menurut Hanafiah (2005) jumlah CO2 yang dihasilkan mikroorganisme tanah dipengaruhi oleh kondisi lembab dan temperatur yang sesuai. Pada kondisi temperatur yang baik, 1 kg tanah dapat mengeluarkan atau membebaskan 1-30 mg C sebagai CO2.



























IV.  KESIMPULAN


Adapun kesimpulan dari percobaan ini adalah sebagai berikut:
1. Jenis tanah yang diberi bensin memiliki nilai CO2-C tertinggi karena tanah
    yang dicampur bensin merupakan tanah tercemar yang banyak sumber
    energinya.
2. Jenis tanah yang diberi NPK memiliki nilai CO2-C sebesar 5,31 ml/hari untuk
    kelompok 2.
3. Konsentrasi CO2 didalam tanah (respirasi tanah) sangat dipengaruhi oleh
    jumlah mikroorganisme yang berada didalam tanah tersebut.
4. Jumlah CO2 yang dihasilkan oleh tanah dari aktivitas mikroorganisme
    dipengaruhi oleh faktor seperti bahan organik, kelembaban, aerasi dan sumber
    energi.














DAFTAR PUSTAKA


Alexander, M. 1977. Introduction to Soil Microbiology. Academic Press:
Newyork.

Hanafiah, K. A. 2005. Biologi Tanah: Ekologi dan Makrobiologi Tanah. Grafindo
Persada: Jakarta.

Sutedjo, M. 1996. Mikrobiologi Tanah. Rineka Cipta: Jakarta.

Swedya, 1996. Mikroorganisme Tanah dan Pertumbuhan Tanaman. UI Press:
Jakarta.

Wahyuni, 2003. Mikrobiologi dan Ekologi Tanah. Erlangga: Jakarta.






























LAMPIRAN








PERHITUNGAN


(1) Perubahan warna menjadi tidak berwarna (indikator penolptalin)
    K2CO3  +  HCl            KCl  +  KHCO3
             (4,1 ml)

(2) Perubahan warna kuning menjadi pink (indikator metil oranye)
    KHCO3  +  HCl             KCl  +  H2O  +  CO2
            (6,1 ml)


Diket:    a = 6,1 ml
    b = 3 ml (kontrol)
    t = 0,1 N
    n = 7 hari

Dit:    r = ?
Jawab:
r =  (a – b) x t x 120 / n
  = (6,1 – 3) x 0,1 x 120 / 7
  = 5, 31 ml


NB : JANGAN LUPA KASIH KOMENTAR SAMA JOIN KE SITE INI YAAAA :D MAKASIHHH

Read More

PENDUGAAN POPULASI CACING TANAH DAN MESOFAUNA TANAH

PENDUGAAN POPULASI CACING TANAH DAN MESOFAUNA TANAH
(Laporan Praktikum Biologi dan Kesehatan Tanah)







Oleh
Kelompok 2

Miandri Sabli Pratama    1014121133
Ni Wayan Devhi        1014121138
Reza Prasetia            1014121152
Tety Maryenti            1014121179
Tiya Oviana            1014121185














PROGRAM STUDI AGROTEKNOLOGI
FAKULTAS PERTANIAN
UNIVERSITAS LAMPUNG
2012
I.  PENDAHULUAN


A.  Latar Belakang

Didalam tanah terdapat berbagai jenis biota tanah, antara lain mikroba (bakteri, fungi, aktinomycetes, mikroflora, dan protozoa) serta fauna tanah. Masing-masing biota tanah mempunyai fungsi yang khusus. Dalam kaitannya dengan tanaman, mikroba sangat berperan dalam membantu pertumbuhan tanaman melalui penyediaan hara (mikroba penambat N, pelarut P), membantu penyerapan hara (cendawan mikoriza arbuskula), memacu pertumbuhan tanaman (penghasil hormon), dan pengendalian  hama penyakit (penghasil antibiotik).

Pada beberapa dekade yang lalu fauna tanah selalu diabaikan, tetapi pada belakangan ini fauna tanah banyak mendapatkan perhatian para peneliti. Hal ini disebabkan fauna tanah ternyata sangat banyak kontribusinya terhadap struktur tanah dan pembentuk humus tanah.

Beberapa grup fauna banyak menghuni tanah seperti cacing tanah, nematoda, mesofauna, dan mikrofauna. Beberapa mesofauna yang penting bagi tanah adalah dari kelompok Collembola dan Akarina, selain tentu juga cacing tanah. Cacing tanah sering disebut “perut bumi” karena semua mikroorganisme menguntungkan ada diperut cacing tanah. Karenanya, cacing tanah berperan penting dalam mempercepat proses pelapukan bahan organik sisa.


B.  Tujuan

Adapun tujuan dari percobaan ini adalah sebagai berikut:
1. Menduga populasi cacing tanah dan mesofauna tanah.
2. Untuk mengetahui keanekaragaman jenis fauna tanah yang tertangkap.
II.  METODOLOGI


A.  Alat dan Bahan

Alat yang digunakan adalah:
•    Alat kotak persegi 25x25 cm
•    Alat berlese/Tullgreen
•    Gelas breaker
•    Mikroskop binokuler
•    Cawan petri
•    Pinset
•    Bola lampu 25 watt
•    Ayakan berlubang 2 mm

Bahan yang digunakan adalah:
•    Alkohol
•    Etanol 60 %
•    Sampel tanah


B.  Cara Kerja

1. Prosedur pendugaan cacing tanah
Disiapkan alat kotak persegi berukuran 25x25 cm
       

Ditentukan secara acak lokasi yang akan dihitung cacing tanahnya dengan melempar alat kotak persegi tersebut
       

Ditandai tempat tersebut dan digali dengan hati-hati sedalam 0-10 cm dan 10-20 cm pada setiap lokasi

       

Dihitung cacing tanah yang terdapat dalam sampel dengan metode pemilihan dengan tangan
       

Tanah yang sudah diambil, diinkubasi kembali antara 1 sampai 4 minggu
   


2. Prosedur Pendugaan Mesofauna Tanah
Dimasukkan 100 gr sampel tanah kedalam alat berlese yang dilengkapi saringan dan bola lampu 25 watt
   

Diletakkan 50 ml etanol 60% dibawah corong penampang alat tersebut dan dihidupkan stop kontak alat dan pengekstrakan dilakukan selama 48 jam
       

Setelah ditampung, dipindahkan mesofauna dari dalam larutan etanol ke cawan petri
       

Diamati jenis dan jumlahnya masing-masing serta totalnya dengan bantuan mikroskop pada perbesaran 40-400 x













III.  HASIL PENGAMATAN DAN PEMBAHASAN


A.  Hasil Pengamatan

Pada lahan alang-alang kedalaman 0-10 cm didapat 2 ekor cacing.
Lahan Hutan kedalaman 0 – 10 cm didapat 2 mesofauna.

B.  Pembahasan

Menurut Darwati (2007) Mesofauna adalah jenis fauna yang memiliki ukuran tubuh 0,1-2 mm. Umumnya jenis yang mendominasi pada tanah hutan adalah arthropoda. Jenis-jenis springtails, sow bugs, ticks dan mites, jumlahnya banyak sekali pada semua tanah hutan dan sangat berperan dalam proses dekomposisi serasah. Jenis-jenis ini umumnya makan bahan organik dan melakukan pemindahan bahan organik dari permukaan kedalam horison tanah. Beberapa jenis seperti sow bugs aktif sebagai pemakan daun atau kayu yang mati sehingga sangat penting dalam proses penghancuran daun-daun segar yang jatuh.

Menurut Arief (2001) Fauna tanah merupakan salah satu kelompok heterotrof utama didalam tanah. Keberadaan mesofauna tanah dalam tanah sangat bergantung pada ketersediaan energi dan sumber makanan untuk melangsungkan hidupnya, seperti bahan organik dan biomassa hidup yang semuanya berkaitan dengan aliran siklus karbon dalam tanah. Dengan ketersediaan energi dan hara bagi mesofauna tanah, maka perkembangan dan aktivitas mesofauna tanah akan berlangsung baik dan timbal baliknya akan memberikan dampak positif bagi kesuburan tanah.

Berdasarkan hasil pengamatan, beberapa identifikasi mesofauna tanah yang diketahui adalah
1. Springtail atau Colembola merupakan salah satu contoh mesofauna. Panjang

tubuhnya berkisar 0,25-8 mm. Pada umumnya warna tubuh mirip dengan warna tanah, hitam, coklat, abu-abu tua. Dijumpai dipermukaan tanah, didalam tanah yang tertutup oleh serasah atau humus tebal, lembab tidak basah dan tidak terkena cahaya matahari langsung, atau tempat berlindung.
2. kutu oribatida kebanyakan berukuran kecil (0,08-1 mm) memiliki ciri umum arachnida, yaitu memiliki tubuh tersegmentasi. Memiliki semua tahap perkembangan, dari telur, larva, nimfa dan fase imago. Bersifat detrivores yang membantu untuk memecah sampah hutan dan bahan organik mati seperti sel-sel kulit (Sutedjo, dkk. 1996).

Cacing tanah ditemukan hanya 2 ekor saja, karena kepadatan populasi cacing tanah sangat bergantung pada faktor fisik kimia tanah dan tersedianya makanan yang cukup bagi cacing tanah. Demikian juga jenis tumbuhan yang tumbuh pada suatu daerah sangat menentukan jenis cacing dan kepadatan populasinya. Distribusi bahan organik dalam tanah berpengaruh terhadap cacing tanah, karena terkait dengan sumber nutrisinya sehingga pada tanah miskin bahan organik hanya sedikit jumlah cacing tanah yang dijumpai (Hanafiah, 2005).

Berdasarkan hasil pengamatan, pada lahan alang-alang, hanya ditemukan 2 cacing tanah, karena pada lahan alang-alang merupakan tanah yang miskin bahan organik tanahnya dan tanahnya yang tidak subur dengan sifat fisik dan sifat kimia yang jelek. Pada kedalaman 0-10 cm (lapisan top soil) hanya 2 ekor cacing yang didapatkan. Mesofauna yang terlihat ada dua pada lahan hutan, pada kedalaman 0-10 cm menggunakan ring sampel. Termasuk jenis Acarina yang hidup ditanah.

Menurut Suin (1997) suhu tanah merupakan salah satu faktor fisika tanah yang sangat menentukan kehadiran dan kepadatan organisme tanah, dengan demikina suhu tanah akan menentukan tingkat dekomposisi material organik tanah. Pada pH tanah juga berpengaruh pada keberadaan cacing tanah dan mesofauna tanah. Ada fauna tanah yang hidup pada tanah yang ber-pH asam dan adapula yang senang hidup pada tanah yang memiliki pH basa.



IV.  KESIMPULAN


Adapun kesimpulan dari percobaan yang telah dilakukan adalah sebagai berikut:
1. Keberadaan mesofauna tanah dipengaruhi oleh ketersediaan energi dan sumber
    makanan seperti bahan organik dan biomassa hidup.
2. Keberadaan cacing tanah dipengaruhi oleh faktor fisik dan kimia tanah serta
    tersedianya makanan yang cukup.
3. Vegetasi yang tumbuh diatas permukaan tanah sangat mempengaruhi
    keberadaan dan keragaman fauna tanah.


















DAFTAR PUSTAKA


Arief, A. 2001. Hutan dan Kehutanan. Kanisius: Jakarta. 179 hal.

Darwati, 2007. Keragaman dan Kelimpahan Mesofauna Tanah pada Beberapa
          Tipe Penggunaan Lahan di Daerah Gunung Bawang. Thesis S2. Fakultas
          Kehutanan. Program Pascasarjana. UGM: Yogyakarta.

Hanafiah, dkk. 2005. Biologi dan Kesuburan Tanah. Rineka Cipta: Jakarta.

Suin, N. M. 1997. Ekologi Fauna Tanah. Bumi Aksara: Jakarta.

Sutedjo, dkk. 1996. Mikrobiologi Tanah. Rineka Cipta: Jakarta.


NB : JANGAN LUPA KASIH KOMENTAR SAMA JOIN KE SITE INI YAAAA :D MAKASIHHH

Read More

PENGOMPOSAN ANAEROBIK

PENGOMPOSAN ANAEROBIK
(Laporan Praktikum Biologi dan Kesehatan Tanah)







Oleh
Kelompok 2

Miandri Sabli Pratama    1014121133
Ni Wayan Devhi        1014121138
Reza Prasetia            1014121152
Tety Maryenti            1014121179
Tiya Oviana            1014121185














PROGRAM STUDI AGROTEKNOLOGI
FAKULTAS PERTANIAN
UNIVERSITAS LAMPUNG
2012
I.  PENDAHULUAN


A.  Latar Belakang
Kompos adalah produk akhir dari proses dekomposisi senyawa organic yang diurai menggunakan bantuan mikroorganisme yang bekerja pada suhu tertentu, kegiatannya dinamakan pengomposan. Pengomposan dengan bahan baku sampah domestic merupakan teknologi yang ramah lingkungan. Sederhana dan menghasilkan produk akhir yang sangat berguna bagi kesuburan tanah dan sebagai penutup/ andfill.

Teknologi pengomposan sampah sangat beragam baik secara aerobic maupun anaerobic. Pengomposan aerobic yaitu dengan menggunakan bantuan udara terbuka. Sedangkan pengomposan anaerobic tanpa menggunakan bantuan udara.



B.  Tujuan

Adapun tujuan dilakukannya pratikum ini adalah :
1. Mahasiswa memahami cara pembuatan pengomposan anaerob.
2. Mahasiswa mengerti proses terbentuknya kompos.
3. Mahasiswa dapat mempraktikannya dalam kehidupan sehari-hari







II.  METODOLOGI PERCOBAAN



A.  Alat dan Bahan

Adapun alat-alat yang digunakan adalah :
- kantung plastic hitam
- ember
- gunting
- batu

Adapun bahan-bahan yang digunakan adalah :
- jerami 2 karung/4 kg
- kotoran sapi 2 kg
- larutan Em4 15 ml
- air gula 1 liter
- air mineral 10 liter


B.  Cara Kerja

Adapun cara kerja yang digunakan adalah sbb :





   









III. HASIL PENGAMATAN DAN PEMBAHASAN


A. Hasil Pengamatan
   
hasil yang telah didapatkan dari pengamatan adalah :
   
Hari    Perubahan
3    Belum terjadi perubahan
7    Warna menjadi coklat
14    Warna menjadi coklat kehitaman
21    Warna jadi hitam dan seresah mulai hancur
28    Warna hitam pekat dan seresah hancur


B.  Pembahasan

Pada pratikum pengomposan didapatkan hasil sebagai berikut. Pada waktu 3 hari    belum terjadi perubahan . kemudian hari ke7 warna menjadi coklat. Lalu hari ke14 warna menjadi Coklat kehitaman. Setelah hari ke21 warna menjadi benar-benar hitam dan seresah mulai hancur. Dan terakhir pada hari ke28 warna menjadi hitam pekat dan seresah hancur.

Hal-hal yang mempengaruhi pengomposan diantaranya rasio c/n , ukuran partikel,
aerasi, porositas, kelembaban, temperature/suhu, pH, kandungan hara, kandungan
bahan berbahaya, dan lama pengomposan (Suhut & Sulundik, 2006).

Kelebihan pengomposan anaerob adalah bakteri-bakteri yang tidak menguntungkan bagi tanaman akan mati karena tidak mendapatkan pasokan 
oksigen dan suhu lingkungan yang panas akan membunuhnya. Kelebihan yang lain adalah tidak bau, karena tertutup rapat, praktis kontak dengan lingkungan luar tidak ada selain itu kelebihan dari pengomposan anaerob adalah kelembaban dapat terjaga serta N tidak terbuang keudara.
pengomposan anaerob terbilang cepat karena pengomposan anaerob ditutup/disungkup untuk mempertahankan suhu dan kelembaban sehingga pengomposan anaerob lebih cepat bila dibandingkan pengomposan aerob (Bacteria taxonomi browser, 2012).
   
Em4 merupakan kumpulan mikroba terpilih dalam bentuk cair. Didalam Em4 terdapat MO yang sangat menguntungkan bagi pertumbuhan tanaman. Setiap bahan organic yang terfermentasi oleh mikroba Em4 dalam kondisi semi anaerob pada suhu 40-50 derajat celcius. Pembuatan pupuk organic menggunakan teknologi Em4 pada dasarnya adalah proses pengomposan yang terjadi secara fermentative (Wikipedia, 2012)
IV.  KESIMPULAN



Adapun kesimpulan dari percobaan ini adalah :
1. Pengomposan anaerob mencapai hasil maksimum pada hari ke 28
2. Pengomposan anaerob lebih cepat bila dibandingkan pengomposan lainnya.
3. Em4 merupakan peran pokok dalam pengomposan anaerob
4. Didalam Em4 terdapat mikroba-mikroba antara lain lactobacillus ragi, bacteri
    fotositetik, actinomycetes, jamur pengurai selulosa.

























DAFTAR PUSTAKA

       
Anonim, 2012. “Bacteria (eubacteria)”.Taxonomy Browser. NCBI. Diakses 13 November 2012.

Suhut & Sulundik, 2006. Meningkatkan Kualitas Kompos.Kiat Mengatasi               
    Permasalahan Praktis. Agromedia Pustaka: Jakarta.

http://id.wikipedia.org/wiki/kompos


NB : JANGAN LUPA KASIH KOMENTAR SAMA JOIN KE SITE INI YAAAA :D MAKASIHHH

Read More